细胞实验中原代培养与传代培养的区别主要体现在哪些方面?
小杨 / 2025-05-28 09:48:26

 

百欧博伟生物:在细胞实验中,原代培养(Primary Culture)和传代培养(Subculture/Passage)是细胞培养的两个关键阶段,二者的主要区别体现在以下方面:
 
一、定义与来源
 
1、原代培养:
 
直接从活体组织(如动物、植物或人体)分离的细胞进行的首次培养。
 
细胞来源:新鲜组织经酶(如胰蛋白酶、胶原酶)消化或机械分离后获得。
 
特点:细胞未经过传代,仍保留原始组织的遗传和功能特性。
 
2、传代培养:
 
将原代培养的细胞从原培养容器中分离,重新接种到新培养基中继续扩增的过程。
 
细胞来源:原代培养的细胞增殖到一定密度后(通常覆盖培养器皿80-90%面积),需分瓶扩增。
 
特点:细胞可能经历多次传代,逐渐发生表型或基因型改变。
 
二、操作步骤
 
1、原代培养:
 
步骤复杂:需组织获取→灭菌→消化→离心→细胞悬液制备→初次接种。
 
存活率低:分离过程易损伤细胞,部分细胞无法贴壁或增殖。
 
异质性强:可能包含多种细胞类型(如成纤维细胞上皮细胞等)。
 
2、传代培养:
 
步骤简单:移除旧培养基→胰酶消化贴壁细胞→离心收集→分瓶扩增。
 
存活率高:细胞已适应体外环境,增殖能力较强。
 
均质性提升:传代过程中部分细胞类型可能被淘汰(如成纤维细胞过度生长)。
 
三、细胞特性
 
 
四、应用与限制
 
1、原代培养的优势:
 
结果更接近体内真实情况,适合研究细胞-组织特异性功能。
 
常用于药物筛选、毒性测试、肿瘤细胞原代培养等。
 
缺点:操作繁琐、污染风险高、细胞存活率低、批次差异大。
 
2、传代培养的优势:
 
可大规模扩增细胞,满足实验需求。
 
通过多次传代可筛选出稳定细胞株。
 
缺点:遗传漂变、功能退化、可能发生恶性转化(永生化)。
 
五、注意事项
 
原代培养需严格无菌操作,避免微生物污染。
 
传代次数限制:正常细胞存在“海弗利克极限”(有限分裂次数),而癌细胞可能无限增殖。
 
实验设计中需明确标注细胞代数,高代数细胞可能影响实验结果可靠性。
 
六、总结
 
1、原代培养:起点是新鲜组织,保留体内特性,但操作复杂、异质性强。
 
2、传代培养:起点是原代细胞,便于扩增和标准化,但可能丧失原有特性。
 
根据实验目的(如生理研究vs.细胞工程)选择合适的培养方式!
 
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