小鼠胚胎成纤维细胞的培养方法!
小佳 / 2019-05-14 14:20:06

一、分离方法
1、断颈法处死怀孕12~13天的CF-1小鼠,浸入75%的酒精中消毒。
2、将小鼠放在超净台无菌的解剖盘中,打开腹腔,找出子宫,用剪刀将左右两侧的子宫在输卵管与子宫角的衔接处剪下,小心剪下子宫的联体部分,置于无菌的60mm培养皿中。
3、将子宫置于15ml离心管中,用10ml PBS洗3遍。
4、用尖镊子撕开子宫壁和胎膜,取出胎鼠,放在新的培养皿中。
5、用PBS将胎鼠洗3遍。
6、用灭菌的眼科剪去除胎鼠的胚囊,释放胚胎,并胚胎计数。
7、将胚胎移到干净的培养皿中,PBS洗3次。
8、用镊子小心的去除胚胎的头和肝脏,PBS洗3次。
9、将胚胎转移至新的培养皿中,用无菌剪刀将组织充分剪碎,加入0.25%.胰酶,同时吹打几分钟使其消化完全。
10、用同样体积的MEF完全培养基中和胰酶。
11、一个T75瓶加10m1 MEF完全培养基,将已消化的胚胎加入培养瓶中,放在5%CO2培养箱中培养,培养瓶注明细胞名称、代数及日期。
二、MEF的传代
1、将T75瓶中的MEF培养基吸出。
2、加入胰酶,于37℃的CO2培养箱中放置3~5分钟。
3、取出瓶子,轻轻晃动,可见白色的细胞层开始从瓶子的底壁掉落。用手掌轻拍瓶侧3~5次加快贴壁细胞脱落。
4、加入同等体积的MEF培养基,混匀,吹打几次以形成单细胞悬浮液。
5、将其转移至15ml离心管,以1000rpm的速度离心5分钟。
6、根据细胞数量,将上述细胞均分至若干个新的T75瓶子中,放在5%CO2培养箱中培养,逐日观察。
7、吸去培养液,加3ml 0.25%胰酶至完全覆盖瓶底(以T75为例)。
8、CO2培养箱中孵育3~5分钟,不时轻拍瓶壁,使细胞层脱落。
9、加入同等体积的。MEF培养液中和胰酶,吹打混匀。
10、将其转移至15ml离心管,用电子计数器进行细胞计数后,以1000rpm的速度离心5分钟。
11、移去上清,用少量新鲜的MEF培养液重悬细胞沉淀。
12、缓慢加入等量的MEF细胞冻存液(2×)并混匀。
13、分装上述细胞悬液于2ml冻存管,在冻存管上注明细胞名称、代数、数目、冻存时间。
14、将冻存管放到冻存盒中,-80℃冰箱过夜。根据需要,将冻存管转移至液氮罐中以便长期保存。
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