1.从培养容器中吸出用过的细胞培养基并丢弃;
2.用不含钙、镁的平衡盐溶液冲洗细胞(每10cm2培养表面积约2mL溶液);从与贴壁细胞层相对的容器一侧轻轻加入冲洗液,以避免搅动细胞层,前后摇晃容器数次(注:冲洗步骤可去除可能抑制解离剂的作用的少量血清、钙和镁);
3.从培养容器中吸出冲洗液并丢弃,向培养瓶中加预热的解离剂;试剂量应足以覆盖细胞层(每10cm2大约0.5mL);
4.轻轻摇晃容器,使试剂完全覆盖细胞层;吸出多余解离试剂,T25细胞培养瓶留200ul左右即可;
5.将培养容器在室温下孵育约2分钟(请注意实际孵育时间根据所用细胞系不同而有所差异);
6.在显微镜下观察细胞解离情况;如果解离程度未达90%,可将孵育时间延长几分钟,每30秒钟检查一次解离情况;也可轻轻拍打培养容器以加快细胞解离;
7.细胞解离程度大于等于90%时,倾斜培养容器,使细胞上液体尽快流尽;加入所用解离剂两倍体积的预热完全生长培养基;吹打细胞层表面数次,使培养基分散;
8.将细胞转移到15ml无菌离心管,中,以200×g的离心力离心3-5分钟(请注意离心速度和时间依细胞种类不同而有所差异);
9.用最少体积的预热完全生长培养基重新悬浮细胞沉淀,将细胞悬液按照推荐比例稀释,并将适量体积细胞悬浮转移到新的细胞培养容器中,把细胞放回培养箱(注:如果使用培养瓶,以便进行充分的气体交换,除非您使用得是通气式培养瓶和透气性瓶盖)。
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