凝胶膜过滤方法实验的操作流程与质量控制要点及注意事项!
小杨 / 2026-02-03 10:02:47

 

百欧博伟生物:凝胶膜过滤是基于分子大小和形状差异的液相层析分离技术,核心原理是利用多孔凝胶的分子筛效应:小分子可进入凝胶颗粒的孔隙中,在柱内停留时间长、洗脱体积大;大分子无法进入孔隙,随流动相快速流出,洗脱体积小,从而实现不同分子量物质的分离。该方法温和、不改变物质天然构象,广泛用于蛋白质、多糖、核酸等生物大分子的分离、纯化、脱盐和分子量测定。
 
一、核心材料与试剂
 
1、洗脱液(流动相)
 
要求温和、不与样品/凝胶反应、维持样品天然结构,常用:
 
中性缓冲液:PBS(0.01~0.05 mol/L,pH 7.0~7.4)、Tris-HCl(0.05 mol/L,pH 7.5~8.0),适用于蛋白质/核酸;
 
纯水/低盐溶液:适用于多糖脱盐;
 
注意:洗脱液需经0.22 μm 滤膜过滤并脱气,避免凝胶柱产生气泡,影响分离效果。
 
2、辅助试剂与耗材
 
层析柱(玻璃/不锈钢,规格根据上样量选择:柱高/柱径比一般为 10:1~30:1,柱高越高分辨率越好);
 
恒流泵、紫外检测器、收集器(层析系统);
 
烧杯、玻璃棒、漏斗、滤膜、离心管、移液管等;
 
平衡液(与洗脱液一致)、样品缓冲液(与洗脱液一致,避免样品变性/沉淀)。
 
二、实验操作流程(经典柱层析法,最常用)
 
全程遵循无菌、无气泡、温和操作原则,防止凝胶破碎和样品失活,步骤分为凝胶预处理→装柱→柱平衡→上样→洗脱→收集与检测→柱再生与保存。
 
1、凝胶预处理
 
目的是使凝胶充分溶胀,去除杂质、细颗粒,保证柱床均匀。
 
称量与溶胀:按层析柱体积(一般凝胶床体积占柱容积的 80%)称量干凝胶,加入过量洗脱液/纯水,室温或水浴溶胀(葡聚糖凝胶 G-25 室温溶胀 2~4 h,G-200 需室温溶胀 24 h 或沸水浴溶胀 1 h,缩短溶胀时间且避免结块);
 
脱气:溶胀后的凝胶悬液超声脱气 5~10 min,或抽真空脱气,去除内部气泡;
 
除杂与过筛:凝胶悬液静置后,倾去上层浮液(含细颗粒、杂质),用洗脱液反复洗涤 2~3 次,也可通过纱布/尼龙网过筛,去除细颗粒(细颗粒会堵塞柱床,降低流速)。
 
2、装柱(关键步骤,直接影响分辨率)
 
核心是一次性装柱、柱床均匀、无气泡、无断层,分为湿法装柱(最常用)和干法装柱(仅适用于少数凝胶),此处介绍湿法装柱:
 
层析柱准备:将层析柱垂直固定在支架上,柱内加入 1/3 体积的洗脱液,打开柱下端出口,使洗脱液缓慢流出,排出柱内和出口处的气泡;
 
装柱:将溶胀好的凝胶悬液搅拌均匀,沿柱壁缓慢倒入(避免产生气泡),倒至凝胶床达到预定高度(柱高/柱径比≥10:1);
 
沉降与压实:关闭柱下端出口,让凝胶自然沉降 30~60 min,然后打开出口,用洗脱液以低流速(0.5~1 mL/min) 冲洗柱床,使凝胶压实(压实后的柱床应平整、无断层、无气泡);
 
检查柱床:若柱床出现断层、气泡,需倒出凝胶重新装柱。
 
3、柱平衡
 
目的是使凝胶柱床的离子强度、pH 与洗脱液一致,保证样品分离的稳定性。
 
用与洗脱液一致的平衡液以1~2 倍柱床体积(CV) 的量,在恒定流速下冲洗凝胶柱(流速与后续洗脱一致);
 
平衡至柱出口的 pH、电导率与平衡液完全一致(可通过 pH 计、电导率仪检测),且柱床高度稳定(无塌陷、无膨胀)。
 
4、上样(核心原则:低体积、高浓度、慢上样)
 
上样体积直接影响分辨率,上样体积越小,分辨率越高,一般上样体积为柱床体积的 1%~5%(分析级分离)或 5%~10%(制备级分离)。
 
样品预处理:样品用样品缓冲液溶解,经0.22 μm 滤膜过滤或 10000 r/min 离心 10 min,去除沉淀和不溶性杂质,避免堵塞柱床;样品浓度控制在 1~5 mg/mL(蛋白质),避免浓度过高导致分子间相互作用,影响分离;
 
上样操作:
 
打开柱下端出口,使柱床表面的洗脱液恰好与凝胶表面平齐(切勿干柱,凝胶干缩会导致柱床破裂),关闭出口;
 
用移液管沿柱壁缓慢滴加样品(避免冲散凝胶床表面),样品加完后,打开出口,使样品缓慢渗入凝胶柱;
 
待样品完全渗入凝胶床后,加入少量洗脱液,冲洗柱壁上的样品,待洗脱液渗入凝胶床后,再加入足量洗脱液至柱内液面高度。
 
5、洗脱
 
核心是恒定流速、连续洗脱,保证分子按分子量大小依次流出。
 
洗脱条件:洗脱液与平衡液一致,流速恒定(根据凝胶类型选择:葡聚糖凝胶 G-25 流速 1~2 mL/min,G-200 流速 0.5~1 mL/min;琼脂糖凝胶流速可适当提高),流速过快会导致分离峰重叠,过慢会增加实验时间且可能导致样品扩散;
 
洗脱方式:采用等度洗脱(单一洗脱液,无需改变 pH 和离子强度),凝胶过滤一般无需梯度洗脱,因分离仅依赖分子筛效应;
 
柱内液面:洗脱过程中,柱内洗脱液液面需始终高于凝胶床表面2~3 cm,防止干柱。
 
6、收集与检测
 
收集:用自动部分收集器按固定体积(1~5 mL /管) 收集洗脱液,记录每管的收集序号;
 
检测:根据待分离物质的性质选择检测方法,实时检测各管洗脱液的目标物含量:
 
蛋白质:紫外分光光度法(A280 nm);
 
核酸:紫外分光光度法(A260 nm);
 
多糖:苯酚 - 硫酸法、蒽酮 - 硫酸法;
 
小分子杂质(如盐):电导率仪、硝酸银法(检测 Cl⁻);
 
绘制洗脱曲线:以收集管序号(或洗脱体积)为横坐标,检测吸光度(或浓度) 为纵坐标,绘制洗脱曲线,出现的吸收峰即为不同分子量的物质,目标峰对应的洗脱液即为纯化的样品。
 
7、柱再生与保存
 
目的是去除柱内残留的样品和杂质,延长凝胶使用寿命,保存后可反复使用。
 
(1)柱再生
 
用2~3 倍柱床体积的洗脱液冲洗凝胶柱,去除柱内残留的样品;
 
若柱床有蛋白吸附(凝胶轻微吸附),可用0.5 mol/L NaCl 溶液冲洗,再用洗脱液平衡至中性;
 
若柱床污染严重,可用70% 乙醇或0.5% 次氯酸钠溶液冲洗,再用大量洗脱液平衡,恢复凝胶活性。
 
(2)凝胶保存
 
短期保存(1~2 周):凝胶柱保持湿润,柱内加入洗脱液,密封柱两端,4℃冷藏,避免反复冻融;
 
长期保存(数月):将凝胶从柱内倒出,用洗脱液洗涤 2~3 次,加入0.02% 叠氮钠(NaN₃) 或70% 乙醇(抑菌剂),悬浮后 4℃冷藏;
 
干凝胶保存:若需长期保存干凝胶,将凝胶用纯水洗涤后,室温晾干,密封保存于干燥处。
 
三、特殊操作:脱盐与小分子去除
 
凝胶过滤是生物大分子脱盐的常用方法,选择葡聚糖凝胶 G-25(分级范围 1000~5000,蛋白质分子无法进入孔隙,盐分子可进入),操作简化,核心要点:
 
上样体积可适当提高(为柱床体积的 20%~30%),提高脱盐效率;
 
洗脱液用纯水或目标缓冲液,流速 1~2 mL/min;
 
检测:蛋白质在 A280 nm 有吸收峰,盐分子无吸收峰,收集蛋白质峰即可得到脱盐后的样品,脱盐率可达 95% 以上。
 
四、分子量测定
 
利用凝胶过滤的洗脱体积与分子量的对数呈线性关系,可测定未知生物大分子的分子量:
 
标准曲线制作:选择 3~5 种已知分子量的球形蛋白标准品,在相同层析条件下上样,测定各标准品的洗脱体积(Ve);
 
计算相对洗脱体积(Kav):Kav=(Ve−Vo)/(Vt−Vo),其中Vo为外水体积(完全排阻的大分子的洗脱体积,如蓝色葡聚糖 2000),Vt为柱床总体积;以logMW(分子量的对数) 为纵坐标,Kav 为横坐标,绘制标准曲线;未知样品测定:在相同条件下测定未知样品的Ve,计算Kav,根据标准曲线查得对应的 logMW,换算得到分子量。
 
注意:该方法仅适用于球形蛋白,非球形蛋白的测定结果会有偏差,需校正。
 
五、关键质量控制与注意事项(QC 要点)
 
1、实验前质控
 
凝胶填料:检查保质期,确认无潮解、结块、污染;
 
洗脱液/缓冲液:现配现用,过滤脱气,检测 pH、电导率是否符合要求;
 
层析柱:检查密封性,确保无漏液,出口无堵塞。
 
2、实验过程质控
 
柱床质量:全程保证柱床垂直、均匀、无气泡、无断层、不干柱,否则重新装柱;
 
流速控制:洗脱过程中流速恒定,避免忽快忽慢,导致峰形展宽、重叠;
 
样品预处理:必须去除沉淀和细颗粒,防止堵塞柱床;样品浓度适中,避免分子间相互作用;
 
温度控制:一般室温(20~25℃)操作,对温度敏感的样品可在 4℃下进行低温层析。
 
3、实验后质控
 
洗脱曲线:目标峰应对称、无拖尾、与杂质峰完全分离,若峰形展宽,可能是上样体积过大、流速过快或柱床不均匀;
 
样品活性:检测纯化后样品的生物活性,确保凝胶过滤过程未导致样品失活;
 
凝胶再生:再生后的凝胶柱需重新平衡,检测柱床流速和分辨率,与新柱一致方可再次使用。
 
六、应用领域
 
生物大分子纯化:蛋白质(酶、抗体、重组蛋白)、多糖、核酸(DNA、RNA)、多肽的分离纯化,获得高纯度天然活性样品;
 
脱盐与小分子去除:生物大分子溶液脱除无机盐、有机溶剂、小分子杂质;
 
分子量测定:球形蛋白、多糖等大分子的分子量快速测定(相对误差 ±5%~±10%);
 
样品浓缩:通过凝胶过滤将稀样品溶液浓缩(选择合适凝胶,使样品分子被排阻,洗脱体积小,浓度提高);
 
蛋白复合物与寡聚体分析:分析蛋白质的天然聚集体,因复合物分子量远大于单体,可有效分离。
 
七、技术优缺点
 
1、优点
 
温和性:分离条件温和,不使用有机溶剂、高盐、强酸强碱,可保持样品的天然构象和生物活性;
 
通用性:仅依赖分子大小,无需样品与凝胶的特异性结合,适用于大多数生物大分子;
 
操作简单:无需复杂的梯度洗脱系统,等度洗脱即可,实验重复性好;
 
可规模化:从分析级(微量样品)到制备级(大量样品),均可通过调整层析柱规格实现,适合实验室和工业生产。
 
2、缺点
 
分辨率有限:仅能分离分子量差异较大(≥2 倍)的物质,对分子量相近的物质分离效果差;
 
上样量小:为保证分辨率,上样体积一般≤5% 柱床体积,制备效率较低;
 
实验时间较长:流速较慢,尤其是大孔径凝胶,分离一次需数小时甚至数十小时;
 
凝胶成本较高:高品质凝胶价格昂贵,且部分凝胶机械强度低,易破碎。
 
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