细胞传代操作指南:实验前准备、操作步骤及注意事项!
小杨 / 2025-12-23 10:55:04


一、耗材及试剂
 
需准备:
 
无菌器具:干净灭菌的培养皿、50mL 离心管、15mL 离心管、1mL 枪头、1mL 移液器、镊子、马克笔
 
试剂:细胞适配的培养液、血清、胰酶、双抗(青霉素 + 链霉素)、无菌 1×PBS
 
二、注意事项
 
1、所有进入超净台的物品、器具(包括手部),都需喷洒 75% 酒精消毒;
 
2、超净台内操作时,手部不可从敞开的培养皿、管口、瓶口、枪头盒上方经过(避免手臂带菌污染);
 
3、拧开的管盖、瓶盖、培养皿盖,需正扣在台面,严禁倒扣。
 
三、操作原理
 
1、细胞贴壁原因:贴壁细胞会分泌细胞外基质(蛋白、多糖等成分),黏附在特殊处理的培养皿/瓶底部;未贴壁时细胞呈球形,贴壁后会伸展为上皮样或成纤维细胞样形态。
 
2、胰酶的解离作用:胰蛋白酶是丝氨酸水解酶,可切断多肽链中赖氨酸、精氨酸残基的羧基侧肽键,水解细胞间蛋白质,使贴壁细胞从器皿底部脱落分离。
 
3、消化后细胞变球形的原因:细胞自身骨架张力 + 培养液表面张力共同作用,使消化后的细胞恢复球形,镜下观察呈圆形。
 
4、胰酶的最佳条件:37℃、pH=8 时活性最强,因此消化需放入孵箱;通常用 0.25% 胰蛋白酶 + 0.02% EDTA(钙离子螯合剂)增强消化效果。
 
5、血清终止消化的原理:血清含有的蛋白可与胰酶结合,竞争性抑制胰酶活性,从而终止消化。
 
四、实验前准备
 
进入细胞房要求
 
穿专用实验服、拖鞋,戴好手套、口罩,保证进入超净台时无皮肤裸露。
 
观察细胞状态
 
孵箱取细胞前,手部喷 75% 酒精消毒;取出细胞后立即关闭孵箱(避免孵箱温湿度、CO₂浓度波动);
 
显微镜下观察细胞,密度长至 90% 左右即可传代;观察后将细胞放回孵箱,避免长时间暴露。
 
前期准备工作(提前 20min 开始)
 
1、枪头盒喷 75% 酒精后放入超净台,打开盒盖(手勿经过盒上方),开启紫外照射超净台 + 枪头;
 
2、将培养液、血清、胰酶从 4℃冰箱取出,放入 37℃水浴锅预热;
 
3、20min 后关闭紫外,合上枪头盒,将实验用品放入超净台:
 
用镊子撕去瓶口封口膜(丢弃);
 
用 75% 酒精浸泡的棉花擦拭移液器、枪头盒、离心管盖边缘、培养液瓶盖边缘及台面;
 
4、配置含血清的培养液(50mL 离心管中):
 
管盖正扣台面,加入 45mL 含双抗的培养液(双抗:培养液 = 1:100);
 
加入 5mL 血清(常规比例 10%,脆弱细胞可加至 20%);
 
5、准备 15mL 离心管:
 
管盖、管壁标注细胞信息;
 
加入 4mL 含血清的培养液(用于终止消化),拧紧盖备用。
 
五、细胞传代操作步骤
 
1、孵箱取细胞:手部喷酒精后开孵箱,取细胞后立即关孵箱,将细胞放入超净台,再次对手部消毒后伸入超净台;
 
2、弃旧液 + PBS 润洗:
 
培养皿盖正扣台面,弃去原有培养液;
 
沿培养皿侧壁缓慢加入 1mL 1×PBS(勿直接吹细胞,避免物理损伤),盖上皿盖后轻轻上下晃动 10 次左右;
 
弃去 PBS;
 
3、加胰酶消化:
 
沿侧壁加胰酶(10cm 皿加 3mL,5cm 皿加 1.5mL),盖好皿盖后放入孵箱;
 
4、观察消化状态:
 
每隔 1min 镜下观察,轻轻晃动培养皿,若大片细胞移动即消化完成;禁止过度消化(避免细胞状态变差,勿消化至出现白色絮状物);
 
5、终止消化 + 离心:
 
将培养皿放回超净台,轻轻吹打使细胞全部脱落;
 
将含细胞的胰酶液转移至提前备好的 15mL 离心管(含血清培养液),终止消化;
 
200rcf 离心 4min;
 
6、准备新培养皿:
 
取新培养皿,在皿盖上标注细胞信息(名称、代数、培养人、传代日期、传代比例);
 
7、传代比例选择:
 
根据细胞生长速度决定(例:1 传 4 的细胞,取 1/4 消化后的细胞接种,3 天可长至 90% 密度);
 
8、加培养液至新皿:
 
10cm 新皿中加入 9mL 含 10% 血清的培养液(后续加 1mL 细胞悬液,补足至 10mL 培养体系);
 
9、重悬细胞:
 
离心后弃上清,加入 4mL 含 10% 血清的培养液,轻轻重悬细胞至单个细胞状态(可镜下确认分散度);
 
10、接种 + 孵育:
 
按传代比例取对应体积的细胞悬液,加入新培养皿;
 
划“十”字或“米”字 7-10 次混匀细胞,将培养皿放入孵箱培养。
 
常用器皿的试剂用量参考
 
 
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